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Le stress Oxydant
Oxydation des acides nucléiques
Vitamine E (tocophérol)
Oligoéléments
Table des matières
Introduction
Première partie : Synthèse bibliographique
1. Diabète sucré
1.1. Classification de diabète
1.1.1 Diabète de type 1
1.1.2. Diabète de type 2
1.1.3. Autres types de diabètes spécifiques
1.2. Critères diagnostiques du diabète sucré
1.3. Diabète expérimental
1.3.1. Diabète induit par l’alloxane
2. Le stress oxydant
2.1. Les espèces réactives de l’oxygène (ERO)
2.2. Production de radicaux libres
2.3. Atteintes cellulaires
2.3.1. Peroxydation lipidique
2.3.2. Oxydation des sucres
2.3.3. Oxydation des protéines
2.3.4. Oxydation des acides nucléiques
2.4. Les systèmes de défenses antioxydantes
2.4.1. Antioxydants enzymatiques
2.4.1.1. La superoxyde dismutase (SOD)
2.4.1.2. La glutathion peroxydase (GPx)
2.4.1.3. La catalase (CAT)
2.4.2. Systèmes non enzymatiques
2.4.2.1. Le glutathion
2.4.2.2. Vitamine E (tocophérol)
2.4.2.3. Les caroténoïdes (Vitamine A)
2.4.2.4. L’ubiquinol (Coenzyme Q10)
2.4.2.5. Vitamine C (Acide ascorbique)
2.4.2.6. Oligoéléments
2.4.2.7. Les polyphénols
3. Mécanismes impliqués dans la genèse d’un stress oxydant dans le diabète .
3.1. Auto-oxydation du glucose
3.2. Glycation et produits avancés de glycation
3.3. Activation de la protéine kinase C
3.4. Voie des polyols…
3.5. Métabolisme des hexosamines
4. Les antidiabétiques : de l’efficacité à la toxicité
5. La plante sélectionnée : Allium sativum L.
5.1. Position systématique
5.2. Description botanique
5.3. Sous espèces et variétés
5.4. Origine
5.5. Composition chimique et principes actifs
5.6. Recherches et principaux effets
Deuxième partie : Etude pratique
Chapitre I. Matériel et méthodes
1. Matériel végétal
2. Méthodes
2.1. Etude phytochimique
2.1.1. Dosage quantitatif
2.1.1.1. Dosage des polyphénols
2.1.1.2. Dosage des flavonoïdes
2.1.2. Évaluation in vitro de l’activité antioxydante
2.1.2.1. Test scavenger du radical libre DPPH
2.1.2.2. Test de piégeage du peroxyde d’hydrogène
2.1.2.3. Test de la xanthine oxydase
2.2. Etude biologique
2.2.1. Animaux
2.2.2. Enceinte d’élevage
2.2.3. Induction du diabète
2.2.4. Mode de traitement
2.2.5. Sacrifice et prélèvements d’organes
2.2.6. Dosages biochimiques sanguins
2.2.6.1. Dosage du glucose
2.2.6.2. Dosage de l’hémoglobine glyquée (HBA1c)
2.2.6.3. Dosage de l’insuline
2.2.6.4. Dosage des lipides totaux
2.2.6.5. Dosage du cholestérol
2.2.6.6. Dosage des triglycérides
2.2.6.7. Dosage des transaminases TGO/ TGP
2.2.6.8. Dosage de la phosphatase alcaline (PAL)
2.2.6.9. Dosage du lactate déshydrogénase (LDH)
2.2.6.10. Dosage de l’α amylase
2.2.7. Dosage des paramètres hépatiques du stress oxydant
2.2.7.1. Préparation de l’homogénat
2.2.7.2. Dosage des protéines hépatiques
2.2.7.3. Dosage du glutathion (GSH)
2.2.7.4. Dosage de malondialdéhyde (MDA)
2.2.7.5. Dosage de l’activité enzymatique du catalase (CAT)
2.2.8. Technique histologique
2.3. Etude statistique
Chapitre II. Résultats
1. Etude phytochimique
1.1. Rendement d’extraction
1.2. Analyse quantitative
1.2.1. Teneur en polyphénols totaux
1.2.2. Teneur en flavonoïdes
1.3. Pouvoir antioxydant in vitro
1.3.1. Test scavenger du radical libre DPPH
1.3.2. Test du piégeage du peroxyde d’hydrogène
1.3.3. Test de l’inhibition de la xanthine oxydase
2. Etude biologique
2.1. Impact sur la croissance corporelle
2.2. Etude des paramètres biochimiques sanguins
2.2.1. Impact sur le profile glucidique
2.2.2. Impact sur le profile lipidique
2.3. Impact sue les paramètres enzymatiques
2.4. Etude de quelques paramètres hépatiques du stress oxydant
2.5. Etude de l’histoarchitecture du pancréas
Chapitre III. Discussion
Conclusion & Perspectives
Références bibliographiques
Annexes