Extrait du mémoire incorporation du tourteau d’amande d’abricot en substitution au tourteau de soja dans l’alimentation des animaux domestiques

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Le cyanure est toxique pour les humains et les animaux, en raison de sa capacité à se lier avec le fer, les ions manganèse ou le cuivre qui sont des groupes fonctionnels de nombreuses enzymes, y compris ceux qui sont impliqués dans la réduction de l’oxygène dans la chaîne respiratoire cytochrome. Les intoxications aiguës chez l’homme sont caractérisées par des symptômes tels que vomissements, nausées, maux de tête, étourdissements, des difficultés dans la vision, hyperpnée, les arythmies et peuvent aboutir à l’effondrement et la mort (Mlingi et al, 1992; Niesink et al, 1996 et Merck, 1996). Cela peut se produire en quelques secondes ou quelques minutes après l’inhalation de l’acide cyanhydrique, tandis que l’intoxication par voie orale avec du cyanure peut être fatale dans l’heure (Niesink et al, 1996). Après inhalation, la DL50 a été signalé comme étant d’environ 540 µl / L-HCN au cours des 5 minutes pour  le rat, 170 µl / L-HCN au cours des 30 minutes pour la souris et 300 µl / L-HCN au cours des 30 minutes pour le chien (Merck, 1996). Après exposition par voie orale, une DL50 d’approximativement de 2-6 mg de HCN / kg de poids corporel a été décrite chez les rongeurs et les chiens (Who, 1993).
Un certain nombre d’études chez les rongeurs, le rat, la souris, le cochon de Guinée et le hamster ont été effectuées afin d’établir une dose létale acceptable à l’exposition humaine. Dans une étude de 13 semaines sur des rats, l’administration de NaCN à des doses atteignant 24 mg / kg de poids corporel/ jour (correspondant à 13,2 mg de HCN / kg de poids corporel) incorporée dans l’eau potable, n’a pas entraîné d’effets négatifs significatifs sur le poids corporel, le poids des organes, histopathologie, ou paramètres de pathologie clinique. Aucune preuve de dommages neurologiques de la glande thyroïdienne n’a été constaté (NTP, 1993; l’EFSA, 2004). Chez les souris mâles, le seul effet de signification toxicologique a été la légère réduct ion de la queue de l’épididyme et la mobilité des spermatozoïdes réduite à la dose la plus élevée de 46 mg NaCN / kg de poids corporel par jour (correspondant à 25,4 mg de HCN / kg). Sur la base de ces effets, une dose létale de 16 mg NaCN / kg de poids corporel par jour a été établie pour les souris, ce qui correspond à 8,5 mg CN-/kg de poids corporel par jour (NTP, 1993; l’EFSA, 2004). Des indications de tératogénicité chez la progéniture de hamsters traités avec 120 – 140 mg de glucoside cyanogène linamarin / kg de poids corporel (équivalent à 13,1 à 15,3 mg de HCN / kg de poids corporel) ont été observés (Frakes et al, 1985.).
2.2-Réaction chez ruminants et monogastriques
L’ HCN a un même effet néfaste pour les animaux en général mais avec des sensibilités différentes qu’ils soient monogastriques ou poly  gastriques. Ainsi, les glycosides cyanogènes peuvent subir une hydrolyse acide (Eyjólfsson, 1970 et Bradbury et al, 1991), au niveau de l’estomac, bien que le temps de passage soit relativement court, permettant à la fraction principale de passer dans l’intestin. Une fois dans l’intestin d’un monogastrique, les glycosides sont absorbés, comme cela a été démontré pour la linamarine chez un certain nombre d’espèces animales et chez l’homme (Barrett et al, 1977; Philbrick et al, 1977 ; Brimer et Rosling, 1993 et Hernandez et al, 1995), et pour la prunasine (prulaurasin) et l’amygdaline chez différentes espèces animales (Carter et al, 1980; Rauws et al, 1982, 1983; Sakata et al, 1987).
Alternativement, ils seront hydrolysés par des microorganismes (Carter et al, 1980; Bourdoux et al, 1982; Poulton, 1993). Selon Rauws et al (1983), la biodisponibilité de la prunasine est considérablement plus élevée que celle de l’amygdaline (mesurée chez le chien), ceci est probablement due (au moins chez le rat dans le jéjunum et l’iléon), que l’amygdaline n’est pas absorbée en tant que telle, mais est partiellement hydrolysée en prunasine qui à son tour peut-être transférée intacte à travers la paroi intestinale, sans clivage de la liaison glycosidique (Strugala et al., 1995) et est absorbée par l’intermédiaire du système de transport du glucose. Ainsi l’amygdaline absorbée sera excrétée sous forme inchangée dans l’urine (Ames et al, 1978; Moertel , 1981, Brimer et Rosling, 1993 et Hernandez et al, 1995).
Adewusi et Oke (1985), ont démontré que le foie, la rate et les reins (expérience faite sur les rats) pouvaient hydrolyser l’amygdaline glycoside cyanogène mais pas à un degré significatif. La libération de HCN à partir de tissus végétaux se produit seulement quand ils sont endommagés, l’empoisonnement est généralement plus susceptible de se produire chez les ruminants que chez les monogastriques. L’hydrolyse microbienne totale des glucosides cyanogénétiques dans le rumen des moutons a été rapporté par Coop et Blackley (1949) et chez les génisses par Majak et al, 1984, 1987, 1990; Majak , 1992). Alors que, l’acide chlorhydrique dans l’estomac des chevaux et des porcs est assé rapidement détruit par les enzymes végétales qui libèrent la toxine.
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Sommaire: Incorporation du tourteau d’amande d’abricot en substitution au tourteau de soja dans l’alimentation des animaux domestiques

Introduction
Partie bibliographique
Chapitre I : Généralités sur l’abricotier
1) Classification
2) Répartition géographique
2.1) En Algérie
2.2) Dans le monde
3) Les principales variétés cultivées en Algérie
4) Emploi de l’abricot en agro-industries
4.1) Jus et nectars
4.2) Confitures et marmelades
4.3) Fruits confits
4.4) Fruits séchés
4.5) Fruits au sirop
5) Les sous-produits
5.1) La coque
5.2) L’amande
Chapitre II : Le tourteau d’amande d’abricot
1) Composition chimique
2) Facteurs anti-nutritionnels
2.1) Glucosides cynogénétiques
2.2) Réaction des ruminants et monogastriques
2.2.1) Réaction des monogastriques
2.2.2) Réaction des ruminants
4) Méthodes de détoxification
Partie expérimentale
I) Objectif 
II) Détermination de la valeur nutritive 
1) Matériel et méthodes
1.1) Matériel
1.2) Méthodes
1.2.1) Méthodes d’obtention du tourteau
1.2.2) Méthodes de détoxification : Méthode AZOUZ et al.
(2009)
1.2.3) Les méthodes analytiques
1.2.3.1) La composition chimique
1.2.3.2) Le dosage de l’acide cyanhydrique (HCN)
1.2.3.3) La digestibilité in vitro de la MO
1.2.3.4) La digestibilité in vitro des protéines
1.2.3.5) La détermination de l’énergie brute
1.3) Les méthodes de calculs
1.4) Traitement statistique
2) Résultats et discussion
2.1) Teneur en acide cyanhydrique (HCN)
2.2) Composition chimique
2.3) Composés pariétaux
2.4) Digestibilité de la matière organique et des protéines
2.5) Energies brutes
2.6) Unités fourragères lait (UFL) et viande (UFV)
2.7) Protéines digestibles intestinales (PDI)
3) Conclusion
III) Essai sur poulet de chair 
1) Matériel et méthodes
1.1) Matériel
1.1.1) Site de l’expérimentation
1.1.2) Animaux
1.1.3) Aliment
1.2) Méthodes
1.2.1) Conduite de l’essai
1.2.2) Paramètres zootechniques mesurés
1.2.3) Analyse statistique
2) Résultats et discussion
2.1) Résultats
2.2) Discussion
3) Conclusion
IV) Essai sur ovins à l’engrais 
1) Matériel et méthodes
1.1) Matériels
1.1.1) Schéma expérimental
1.1.2) Les animaux
1.1.3) Les aliments
1.2) Méthodes
1.2.1) Les mesures
1.2.2) Analyses statistiques
2) Résultats et discussion
2.1) Performances zootechniques des agneaux
2.2) Caractéristiques des carcasses
2.2.1) Rendement carcasse et état d’engraissement
2.2.2) Tissus osseux et musculaires
2.2.3) Mensurations des carcasses
2.2.4) Qualité de la viande
3) Conclusion
IV-Analyse économique 
1-Typologie des charges
2-Choix de la méthode
3-Calcul du prix de revient d’un kilogramme de tourteau d’amande
d’abricot
3.1-Répartitions des coûts directs par kilogramme
3.1.1- Calcul du CVD (charge variable directe DA / kg TAAD)
3.1.2- Calcul du CFD (Charges fixes directe)
3.1.3 Calcul de la CVI (Charges variables indirectes)
3.2 Prix de revient du kilogramme (CTR)
Conclusion générale
Références bibliographiques

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Incorporation du tourteau d’amande d’abricot en substitution au tourteau de soja dans l’alimentation des animaux domestiques (2,30 MO) (Rapport PDF)